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流式細胞制備-磁珠細胞分選方案(陽性、陰性分選)

磁珠分選- 方案A:MagniSort?陽性分選

引言

     下述方案是MagniSort?陽性分選試劑盒的通用操作指南。具體請參見試劑盒內(nèi)的說明書。在陽性分選中,待分選的細胞首先與生物素標(biāo)記的抗體結(jié)合,然后被鏈酶親合素包被的磁珠捕獲。將細胞放入MagniSort?磁座后,陽性細胞被磁場吸住,而陰性細胞仍游離在溶液中,可被棄掉。每個試劑盒中的生物素化抗體和磁珠預(yù)先已滴定好最適濃度,為即用型試劑。

 

注意事項

注:MagniSort? 5mL磁座可產(chǎn)生強磁場。應(yīng)遠離心臟起搏器、信用卡、磁性身份卡、手表、計算機顯示器、硬盤等物品,以免損壞。

 

細胞制備

1. 在未特別說明的情況下,MagniSort?陽性分選試劑盒已優(yōu)化,適用于小鼠二級淋巴組織或正常人PBMC。

2. 用于小鼠細胞時,建議用40μm的尼龍細胞篩清除碎屑,以使試劑盒發(fā)揮出最佳效果。

3. 正常人PBMC的制備,參見“細胞制備-方案D:從全血中提取PBMC”(第28頁)。為使MagniSort?試劑盒發(fā)揮最佳性能,建議徹底洗滌白膜層,去除血小板。

4. 向緩沖液中加入EDTA減少細胞聚集。

 

后續(xù)用于無菌培養(yǎng)

1. MagniSort?陽性分選抗體和陽性分選磁珠中含有少量疊氮化鈉作為防腐劑。當(dāng)使用不含疊氮化鈉的無菌緩沖液時,它不會影響細胞功能。需要根據(jù)測試判斷在特定實驗中的性能。

2. 分選無菌細胞時應(yīng)該在超凈工作臺中進行,并使用帶蓋的聚苯乙烯無菌試管和無菌緩沖液。

 

提供的材料

MagniSort?陽性分選抗體,200次試驗,20μL/次試驗。2-8°C貯存。

MagniSort?陽性分選磁珠,4mL。2-8°C貯存。

所需其他材料

細胞分選推薦使用的緩沖液:添加3%胎牛血清(FBS)和10mM EDTA的PBS或Hank平衡鹽溶液(HBSS)。2-8°C貯存。

MagniSort?磁座,5mL。

12 x 75 mm流式管(5 mL,BD Falcon?,貨號352008或類似產(chǎn)品)。

15mL離心管(BD Falcon?,貨號352099或類似產(chǎn)品)

 

實驗步驟

1. 用適當(dāng)?shù)募毎蛛x液,制備濃度為1x107細胞/100μL(1 x 108/mL)的淋巴細胞懸液。

注:細胞必須制成單細胞懸液。實驗前需要檢查樣本,必要時用渦旋法或移液器去除細胞團塊。

2. 將所需數(shù)量的細胞(不能超過2 x 108個細胞)放入12 x 75 mm的5mL試管中。

3. 每100μL細胞中加入20μLMagniSort?陽性分選抗體。渦旋5次混勻。室溫孵育10分鐘。

4. 加入細胞分離液洗滌細胞,使其總體積達到4mL,在300xg下離心5分鐘。

5. 棄上清,然后用細胞分離液完全重懸細胞至最初的體積。

注:細胞必須制成單細胞懸液,實驗前需要檢查樣本,必要時用渦旋或移液器去除細胞團塊。

6. 每100μL細胞中加入20μLMagniSort?陽性分選磁珠。渦旋5次混勻。室溫孵育10分鐘。

注:為確保最佳性能,將MagniSort?陽性分選磁珠加入細胞之前必須充分混勻。將設(shè)定為1mL的Pipetman? P1000移液器上下吹打5次,或者采用渦旋的方式完全重懸磁珠。7. 用細胞分離液將體積加至2.5mL。將設(shè)定為1mL的Pipetman?P1000移液器上下吹打3次,使其混勻。不能渦旋。

8. 將試管完全插入磁座中間的孔底,室溫孵育5分鐘。

9. 拿起磁座將試管內(nèi)的上清液倒入廢液容器內(nèi);這些是不需要(未結(jié)合)的細胞。將試管倒置1秒鐘,然后回正。注:切勿吸干或搖晃倒置后的試管,否則會降低回收率。如果需要也可以收集起結(jié)合細胞。

10. 從磁座中取出試管并重復(fù)7-9步兩次,總共洗滌細胞3次。

11. 從磁座中取出含目標(biāo)細胞的試管,加入1mL細胞分離液。沿著試管側(cè)壁加入緩沖液,洗滌試管側(cè)壁。此時,試管內(nèi)就是分選的陽性細胞,備用。

 

磁珠分選 -方案B:MagniSort?陰性分選

 

簡介

     以下是MagniSort?陰選試劑盒的通用操作指南,該試劑盒適用于細胞進行陰性分選。具體請參見每個試劑盒內(nèi)的說明書。在陰性分選中,不需要的細胞與生物素化抗體混合液結(jié)合,然后加入鏈霉親和素包被的磁珠。將細胞放入MagniSort?磁座后,不需要的細胞被磁場吸住,而需要的細胞游離在溶液中,將其倒出后即可使用。每個試劑盒中的生物素化抗體和磁珠已預(yù)先滴定好最適濃度,為即用型試劑。

 

注意事項

注意:MagniSort? 5mL磁座可產(chǎn)生強磁場。應(yīng)遠離心臟起搏器、信用卡、磁性身份卡、手表、計算機顯示器、硬盤等物品,以免損壞。

 

細胞制備

1. 在未特別指明的情況下,MagniSort? 陰選試劑盒已經(jīng)過優(yōu)化,專門適用于小鼠二級淋巴組織或正常人PBMC。

2. 用于小鼠細胞時,建議用40μm的尼龍細胞篩清除碎屑,以使試劑盒發(fā)揮出最佳效果。

3. 正常人PBMC的制備,參見“細胞制備-方案D:從全血中提取PBMC”(第28頁)。為使MagniSort?試劑盒發(fā)揮最佳性能,建議徹底洗滌白膜層,去除血小板。

4. 緩沖液中加入EDTA減少細胞聚集。

 

后續(xù)用于無菌培養(yǎng)

1. MagniSort?陰選抗體混合液和陰性分選磁珠中含有少量疊氮化鈉作為防腐劑。當(dāng)使用不含疊氮化鈉的無菌緩沖液時,它不會影響細胞功能。需要根據(jù)測試判斷在特定實驗中的性能。

2. 分選無菌細胞時應(yīng)該在超凈工作臺中進行,并使用帶蓋的聚苯乙烯無菌試管和無菌緩沖液。

 

提供的材料

MagniSort?陰選抗體混合液,200次實驗,20μL/次試驗。2-8°C貯存。

MagniSort?陰性分選磁珠,4mL。2-8°C貯存。

所需其他材料

細胞分選推薦使用的緩沖液:PBS或添加3%FBS和10mM EDTA的HBSS。2-8°C貯存。

MagniSort?磁座,5mL

12 x 75 mm流式管(5 mL, BD Falcon?, 貨號352008或類似產(chǎn)品)

 

實驗步驟

1. 用適當(dāng)?shù)募毎蛛x液,制備濃度為1x107細胞/100μL(1 x 108/mL)的單細胞懸液。

注:細胞必須制成單細胞懸液。實驗前需要檢查樣本,必要時用渦旋法或移液器去除細胞團塊。

2. 將所需數(shù)量的細胞(不能超過2 x 108個細胞)放入12 x 75 mm的5mL試管中。

3. 每100μL細胞中加入20μLMagniSort?陰選抗體混合液。渦旋5次混勻。室溫孵育10分鐘。

4. 用細胞分離液洗滌細胞,使其總體積達到4mL,300xg離心5分鐘。

5. 棄上清,然后用細胞分離液完全重懸細胞至最初的體積。

注:細胞必須制成單細胞懸液。實驗前需要檢查樣本,必要時用渦旋法或移液器去除細胞團塊。

6. 向每100μL細胞中加入20μL MagniSort?陰性分選磁珠。渦旋5次混勻。室溫孵育5分鐘。

注:為確保最佳性能,將MagniSort?陰性分選磁珠加入細胞之前必須充分混勻。將設(shè)定為1mL的Pipetman? P1000移液器上下吹打5次,完全重懸磁珠,不能渦旋。

7. 用細胞分離液將體積加至2.5mL。將設(shè)定為1mL的Pipetman?P1000移液器上下吹打3次,使其混勻。不能渦旋。

8. 將試管插入磁座中間的孔底,室溫孵育5分鐘。

9. 拿起磁座以連續(xù)的動作將試管內(nèi)的上清液倒入一支新的12x75 mm 5mL試管中并將磁座內(nèi)的試管倒置1秒鐘,然后回正。

注:切勿吸干或搖晃倒置后的試管,否則會降低未結(jié)合細胞的純度。

10. 將磁座中的試管丟棄。

11. 此時,新5mL 12 x 75 mm試管中的陰性細胞即為分選后的目的細胞,備用。

 

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貨號

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