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雙CRISPR/Cas12a輔助的逆轉(zhuǎn)錄-重組酶介導(dǎo)擴(kuò)增(RT-RAA)檢測(cè)方法

背景

      短時(shí)間內(nèi)進(jìn)行大量新冠病毒檢測(cè)是控制新冠病毒傳播的關(guān)鍵之一,發(fā)展可現(xiàn)場(chǎng)診斷的檢測(cè)設(shè)備有利于促進(jìn)新冠肺炎的早期干預(yù)和治療,并有效降低疾病傳播風(fēng)險(xiǎn)。重組酶聚合酶擴(kuò)增(RPA)以及重組酶介導(dǎo)擴(kuò)增(Recombinase aided amplificationRAA)因其快速、簡(jiǎn)便、等溫而成為現(xiàn)場(chǎng)診斷的首選擴(kuò)增技術(shù),但可能存在非特異性擴(kuò)增的假陽性問題。規(guī)律成簇的間隔短回文重復(fù)序列(Clustered regularly interspaced short palindromic repeatsCRISPR)具有良好的特異性和可靠性。RPACRISPR的結(jié)合可以兼具靈敏度和特異性,在開發(fā)下一代POCT分子診斷技術(shù)方面具有廣闊前景。然而,目前大多數(shù)CRISPR/Cas輔助RPA方法包含前擴(kuò)增子的轉(zhuǎn)移和多種人工操作,使測(cè)試過程復(fù)雜化,增加了污染風(fēng)險(xiǎn),而少數(shù)一鍋法的反應(yīng)又需要較長(zhǎng)的反應(yīng)時(shí)間。

     近期,南方科技大學(xué)的研究人員開發(fā)了一種雙CRISPR/Cas12a輔助的逆轉(zhuǎn)錄-重組酶介導(dǎo)擴(kuò)增(RT-RAA)檢測(cè)方法和“樣本進(jìn)-結(jié)果出”的離心微流控平臺(tái),該平臺(tái)可在30min內(nèi)自動(dòng)檢測(cè)1拷貝/μL的新冠病毒(SARS-CoV-2),具有一步、自動(dòng)化、快速和靈敏的優(yōu)點(diǎn),在臨床診斷和疾病預(yù)防方面具有重大潛力。相關(guān)研究成果以“Dual-CRISPR/Cas12a-Assisted RT-RAA for Ultrasensitive SARS-CoV?2 Detection on Automated Centrifugal Microfluidics”為題發(fā)表于Analytical Chemistry期刊。

      該基于雙CRISPR/Cas12a輔助的RT-RAA的自動(dòng)化微流控平臺(tái)操作流程和工作原理如圖1所示,RT-RAACRISPR/Cas12a試劑分別通過冷凍干燥的方式預(yù)裝入擴(kuò)增室和檢測(cè)室進(jìn)行長(zhǎng)期保存。操作人員只需加入核酸樣品溶液,并將芯片放置在相應(yīng)的檢測(cè)儀器上,即可在30分鐘內(nèi)自動(dòng)完成擴(kuò)增-檢測(cè)-報(bào)告流程。針對(duì)新冠病毒的E基因序列設(shè)計(jì)RT-RAA引物、Cas12a-crRNA序列,并引入標(biāo)記FAMBHQ-1的單鏈核酸報(bào)告序列。由于兩個(gè)crRNA識(shí)別不同的位點(diǎn),每個(gè)擴(kuò)增子都可以激活兩個(gè)CRISPR/Cas復(fù)合物,此雙活性復(fù)合物顯著提高了ssDNA-FQ報(bào)告基因的切割率,更有利于低濃度模板RNART-RAA系統(tǒng)的檢測(cè)。


1 CRISPR/Cas12a輔助的RT-RAA的超敏檢測(cè)SARS-CoV-2的自動(dòng)化離心微流控平臺(tái)

      研究人員首先驗(yàn)證了基于雙CRISPR/Cas12a輔助的RT-RAA系統(tǒng)的可行性和靈敏度。引入CRISPR/Cas12后,可見空白組非特異性熒光信號(hào)明顯降低。相較于單一crRNA,雙crRNA策略的熒光信號(hào)最強(qiáng),且實(shí)時(shí)熒光增長(zhǎng)速度最高。此外,也通過凝膠電泳驗(yàn)證了雙crRNA策略的可行性,如圖2a所示,加入混合crRNA樣品后,不僅生成了片段-F和片段-R,還生成了最短的片段-M。接著,研究人員采用無需開蓋的一鍋法測(cè)定該法的靈敏度(將CRISPR/Cas12a體系放在蓋帽,RT-RAA體系放在管內(nèi)),熒光成像和測(cè)定結(jié)果如圖2b所示,該法可檢測(cè)到低至約10個(gè)拷貝的SARS-CoV-2E基因。

2 CRISPR/Cas12a法靈敏快速檢測(cè)SARS-CoV-2

       鑒于微流控平臺(tái)在微尺度流體自動(dòng)控制方面的優(yōu)勢(shì),該研究將雙CRISPR/Cas12a輔助的RT-RAA法引入微流控平臺(tái)(圖3)。該平臺(tái)由三層組裝而成,分別為注射層(1mm)、連接層(1mm)和反應(yīng)層(2mm)。其中,進(jìn)樣層上的8個(gè)進(jìn)樣孔(Φ=1mm)與移液管的20μL完美貼合,出樣孔(Φ=0.5mm)保證樣本量順利進(jìn)入樣品腔。連接層上的連接通道可以保持密封芯片內(nèi)樣品腔與預(yù)分配腔之間的壓力平衡。反應(yīng)層上的600μm寬通道可以保證樣品在低轉(zhuǎn)速800轉(zhuǎn)/分鐘時(shí)順利進(jìn)入放大腔。擴(kuò)增室與檢測(cè)室之間的100μm窄通道和毛細(xì)管閥可以防止低轉(zhuǎn)速下的樣品進(jìn)入檢測(cè),只有在轉(zhuǎn)速達(dá)到3000轉(zhuǎn)/分鐘時(shí)才能使樣品進(jìn)入檢測(cè)室。該芯片可以同時(shí)進(jìn)行32項(xiàng)測(cè)試,只需要兩次樣品轉(zhuǎn)移和兩步反應(yīng),可認(rèn)為是一種低成本、直接檢測(cè)的離心微流控平臺(tái)。圖4a-b顯示了該微流控平臺(tái)的采樣過程、檢測(cè)儀器和檢測(cè)流程。此外,采用不同顏色清晰地顯示不同階段的流動(dòng)狀態(tài),將CuSO?和海藻糖/聚蔗糖的混合物通過冷凍干燥的方式預(yù)加載到芯片中(圖4c)。當(dāng)以800轉(zhuǎn)/分鐘低速旋轉(zhuǎn)時(shí),黃色酸性FeCl?溶液(代表目標(biāo)溶液)進(jìn)入擴(kuò)增室,變?yōu)榫G色,藍(lán)色檢測(cè)室表示無液體進(jìn)入檢測(cè)室。而當(dāng)轉(zhuǎn)速提高到3000轉(zhuǎn)/分鐘時(shí),溶液進(jìn)入檢測(cè)室并變?yōu)榫G色,因此該芯片按照預(yù)期逐步完成樣品轉(zhuǎn)移。

3 離心微流控芯片的結(jié)構(gòu)

4 離心微流控芯片的結(jié)構(gòu)和自動(dòng)化微流控平臺(tái)的工作流程

       接著,研究人員對(duì)該微流控平臺(tái)的靈敏度進(jìn)行了考察,如圖5所示,該法的檢出限為1拷貝/μL。此外,對(duì)34SARS-CoV-2臨床標(biāo)本(26例陽性,8例陰性)進(jìn)行了實(shí)際應(yīng)用,采用商用RT-qPCR作為金標(biāo)準(zhǔn),增加Orf1ab基因?yàn)檠a(bǔ)充靶基因增加檢測(cè)的準(zhǔn)確性,結(jié)果顯示,對(duì)于閾值循環(huán)數(shù)(Ct)<30RT-qPCR檢測(cè)樣品,CRISPR檢測(cè)在10分鐘內(nèi)達(dá)到最大熒光信號(hào),定義為“強(qiáng)陽性”樣品;Ct30RT-PCR檢測(cè)樣品,CRISPR檢測(cè)在10分鐘后無法達(dá)到最大熒光,被定義為“弱陽性”樣品。因此,該雙CRISPR/Cas12a輔助RT-RAA微流控平臺(tái)提供了一種直接、快速、自動(dòng)化的方法,有潛力開發(fā)用于SARS-CoV-2檢測(cè)的POCT診斷。

5 基于雙CRISPR/Cas12a輔助RT-RAA的自動(dòng)微流控平臺(tái)上檢測(cè)SARS-CoV-2

      綜上所述,該研究提供了一種基于雙CRISPR/Cas12a輔助RT-RAA微流控平臺(tái)方法,實(shí)現(xiàn)了SARS-CoV-2快速、現(xiàn)場(chǎng)、自動(dòng)化、超靈敏的檢測(cè)要求,在開發(fā)下一代POCT分子診斷技術(shù)方面具有很大的潛力,可用于家庭或小型診所的傳染病快速檢測(cè)。為了實(shí)現(xiàn)更好的實(shí)際應(yīng)用,今后改進(jìn)和發(fā)展方向如下:(1)通過注射成型的方法制作微流控芯片,滿足定標(biāo)需求;(2)優(yōu)化冷凍干燥技術(shù)參數(shù),延長(zhǎng)芯片的存儲(chǔ)時(shí)間;3)將檢測(cè)結(jié)果無線傳輸?shù)骄W(wǎng)站或報(bào)告服務(wù)器,實(shí)現(xiàn)簡(jiǎn)單、快速、智能、互聯(lián)的疾病診斷和跟蹤;4)同時(shí)檢測(cè)和鑒別其他病毒感染,以實(shí)現(xiàn)有效的疾病治療和管理等。

論文鏈接: https://pubs.acs.org/doi/10.1021/acs.analchem.2c00638  

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