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測定意義：

植物葉綠體中果糖1,6-二磷酸醛縮酶是光合作用中參與calvin循環(huán)的重要酶。催化果糖1,6-二磷酸和景天庚酮糖1,7-二磷酸的合成反應，在各種逆境脅迫下表現(xiàn)不同的響應。

測定原理：

果糖1,6-二磷酸醛縮酶催化果糖1,6-二磷酸生成3-磷酸甘油醛和磷酸二羥丙酮，在磷酸丙糖異構酶和α-磷酸甘油脫氫酶作用下催化NADH和磷酸二羥丙酮生成NAD和α-磷酸甘油，340nm處吸光值的變化可反映果糖1,6-二磷酸醛縮酶活性的高低。

組成：

試劑二：粉劑×1瓶，-20℃避光保存。臨用前加5ml蒸餾水充分溶解；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

試劑三：粉劑×1瓶，-20℃避光保存。臨用前加5 ml蒸餾水充分溶解；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

試劑四：粉劑×1瓶，-20℃避光保存。臨用前加5 ml蒸餾水充分溶解；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

試劑五：液體×1瓶，4℃避光保存；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

自備儀器和用品：

天平、低溫離心機、震蕩儀、研缽、紫外分光光度計、1 ml石英比色皿。

酶液提取：

①總FDA酶提取：建議稱取約0.1g樣本，加入1ml提取液一，冰浴勻漿后超聲破碎（冰浴，200W，破碎3s，間歇7s，總時間1min），然后4℃，8000g離心10min，取上清測定。

②胞漿和葉綠體FDA酶的分離：按照植物組織質量（g）：提取液體積(ml)為1：5～10的比例（建議稱取約0.1g樣本，加入1ml提取液一），冰浴勻漿后于4℃，200g離心5min，棄沉淀，取上清在4℃，8000g離心10min，取上清用于測定胞漿FDA酶活性，取沉淀加1ml提取液二，震蕩溶解后超聲破碎（冰浴，200W，破碎3s，間歇7s，總時間1min），然后4℃，8000g離心10min，取上清測定葉綠體中FDA酶活性。

建議測定總FDA酶活性，按照步驟①提取粗酶液，若需要分別測定胞漿和葉綠體中的FDA，則按照步驟②提取粗酶液。

測定操作：

1. 分光光度計預熱30min，調(diào)節(jié)波長至340nm，蒸餾水調(diào)零。

2. 取1ml石英比色皿，依次加入500μl試劑一，100μl試劑二，100μl試劑三，100μl試劑四，100μl試劑五，100μl粗酶液，充分混勻，記錄340nm處10s的吸光值A1和310s的吸光值A2，△A=A1-A2

計算公式：

（1）按照樣本蛋白濃度計算

酶活單位定義：每毫克組織蛋白每分鐘消耗1 nmol的NADH定義為一個酶活力單位。

FDA（nmol/min /mg prot）= ΔA÷（ε×d）×V反總÷(V樣×Cpr) ÷T=321.54×ΔA÷Cpr

（2）按照樣本質量計算

酶活單位定義：每克組織每分消耗1 nmol的NADH定義為一個酶活力單位。

FDA（nmol/min /g 鮮重）= ΔA÷（ε×d）×V反總÷(W ×V樣÷V樣總) ÷T=321.54×ΔA÷W

（3）按照細胞數(shù)量計算

酶活單位定義：每10⁴個細胞每分鐘消耗1 nmol的NADH定義為一個酶活力單位。

FDA（nmol/min /10⁴ cell）= ΔA÷（ε×d）×V反總÷(V樣×細胞數(shù)量÷V樣總) ÷T

= 321.54×ΔA÷細胞數(shù)量

（4）按照液體體積計算

酶活單位定義：每毫升液體每分鐘消耗1 nmol的NADH定義為一個酶活力單位。

FDA（nmol/min /ml）= ΔA÷（ε×d）×V反總÷V樣÷T=321.54×ΔA

V反總：反應體系總體積，1ml；ε：NADH摩爾消光系數(shù)，6.22×10³ L / mol /cm；d：比色皿光徑，1cm；V樣：加入樣本體積，0.1ml；V樣總：加入提取液體積，1ml；T：反應時間，5 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/ml；W：樣本質量，g